MAGWET
ZALOGUJ
MAGWET
Prenumeruj
Odnów Subskrypcję
Prenumeruj
Czasopisma
Magazyn Weterynaryjny Weterynaria po Dyplomie
Praktyka
Kliniczna
Anestezjologia Behawioryzm Chirurgia Choroby wewnętrzne Choroby zakaźne Dermatologia Diagnostyka laboratoryjna Diagnostyka obrazowa Endokrynologia Farmakologia i toksykologia Gastroenterologia Geriatria Hematologia Kardiologia Laryngologia Nefrologia i Urologia Neurologia Okulistyka Onkologia Ortopedia Parazytologia Rehabilitacja Rozród Stany nagłe Stomatologia Żywienie
Gatunki
Małe zwierzęta Konie Przeżuwacze Świnie Ptaki Zwierzęta egzotyczne Zwierzęta dzikie
Zarządzanie
Praktyką
Prawo Psychologia Zarządzanie
Wydarzenia
Akademia po Dyplomie POLECAMY Kongresy Multiforum Webinaria Odkryj swój dermatologiczny zmysł
Filmy
Aktualności
Sklep
Koszyk
0
ZALOGUJ
Zarejestruj
Zaloguj
Zarejestruj

Chirurgia Rozród Szop pracz

Szop pracz jako pacjent – przypadek kliniczny

14/03/2018

Znieczulenie

W literaturze zalecane są różne schematy chemicznego uspokojenia i znieczulania ogólnego szopowatych, opierające się głównie na mieszankach ketaminy z ksylazyną, ketaminy z acepromazyną i ketaminy z medetomidyną. Autorzy amerykańscy jako bezpieczną mieszankę zalecają również połączenie tiletaminy i zolazepamu (niedostępny na krajowym rynku preparat Telazol®). W opisywanym przypadku znieczulenie uzyskano poprzez podanie domięśniowo mieszanki ketaminy (Bioketan®) z ksylazyną (Xylavet 2%®) w dawce odpowiednio 10 mg/kg i 2 mg/kg. W dostępnej literaturze zalecane dawki poszczególnych elementów mieszanki są różne i wahają się od 1-2 µg/kg ksylazyny + 10 µg ketaminy do odpowiednio 2 mg/ /kg i 20 mg/kg. Możliwe jest również zastosowanie znieczulenia wziewnego, jak opisuje Evans. Po indukcji za pomocą ketaminy lub wspomnianego preparatu Telazol®, stosował on izofluran w standardowy sposób wykorzystywany w znieczulaniu małych zwierząt.

W przypadku znieczulenia szopów i innych gatunków z rodziny szopowatych, należy pamiętać o trzech najczęstszych powikłaniach znieczulenia ogólnego: hipotermii, hipertermii i niedotlenieniu. Hipotermia zdarza się częściej u mniejszych przedstawicieli rodziny Procyonidae – kotofretek (Bassariscus sp.) i olingo (Bassaricyon sp.) – co wynika z niekorzystnego stosunku powierzchni ciała do jego masy. Hipertermia z kolei najczęściej ma miejsce w trakcie zabiegów przeprowadzanych w pomieszczeniach, w których panuje wysoka temperatura, oraz latem. Autorzy amerykańscy zalecają przeprowadzać kontrolę temperatury ciała w trakcie zabiegu nawet co 5 minut w warunkach podwyższonego ryzyka wystąpienia nieprawidłowości.

Small szop ryc10 opt

Ryc. 10. Szop w trakcie wybudzania.

Opis zabiegu

Ponieważ w dostępnej autorom literaturze nie znaleziono doniesień o technice kastracji, zadecydowano wykastrować szopa metodą z rozcięciem i pozostawieniem osłonki pochwowej.

Po podaniu znieczulenia w iniekcji domięśniowej szop został ułożony w pozycji grzbietowej. Po wywiązaniu kończyn i wygoleniu pola operacyjnego odkażono je alkoholem.

Cięcie skórne wykonano na największej wypukłości jądra, przecinając skórę i osłonkę pochwową w celu jego uwidocznienia. Po wyjęciu jądra z osłonek przecięto więzadło ogona najądrza, uwalniając je od osłonek. Powrózek nasienny wraz z osłonką pochwową został podwiązany przy użyciu rozpuszczalnej nici Dexon 3–0 jak najbliżej kanału pachwinowego. Następnie odcięto jądro powyżej przewiązki i odprowadzono kikut powrózka nasiennego w głąb rany pokastracyjnej. Te same czynności zostały poczynione w stosunku do drugiego jądra. Skórę moszny zszyto pojedynczymi węzełkami nicią rozpuszczalną Dexon 2–0.

Zważywszy na predyspozycje gatunku do występowania hiper- i hipotermii podczas znieczulenia ogólnego, podczas trwania zabiegu cały czas była kontrolowana temperatura wewnętrzna organizmu. Początkowo nastąpił nieznaczny jej spadek, z 38,2°C do 37,5°C, w końcowym etapie zabiegu wynosiła ona 37,8°C. Cały czas utrzymywała się w granicach fizjologicznej normy (38°C ± 0,9°C).

Po zabiegu szop został zabezpieczony przed utratą ciepła za pomocą koców i maty grzewczej. Podano mu również atipamezol (0,1 ml Revertoru) w celu zniesienia działania ksylazyny. Rana pooperacyjna została zabezpieczona zmikronizowanym aluminium (Alu-Spray®), a na szyję zwierzęcia nałożono kołnierz ochronny w celu zabezpieczenia szwów przed wygryzieniem. Podano podskórnie enrofloksacynę (Baytril 2,5%®) w dawce 7 mg/kg, a właścicielom wydano enrofloksacynę w postaci tabletek (Enrobioflox® 50 mg) z poleceniem podawania codziennie przez 6 dni pół tabletki rano i wieczorem.

Szwy zdjęto po 10 dniach od zabiegu. Ze względu na znaczną aktywność zwierzęcia i obecność w gabinecie tylko jednego lekarza weterynarii, poddano je sedacji, podając domięśniowo mieszankę Bioketanu® (0,2 ml) i Xylavetu 2%® (0,3 ml). Według właścicielki szop nie wykazywał większego zainteresowania szwami umieszczonymi na mosznie.

W dwa tygodnie po zabiegu szopa zaszczepiono szczepionką Nobivac TRICAT®, w celu zabezpieczenia zwierzęcia przed panleukopenią. W dwa miesiące po zabiegu szop ponownie pojawił się w przychodni w celu przycięcia przerastających pazurów. Właścicielka jednoznacznie stwierdziła, że charakter zwierzęcia ulega wyraźnej zmianie i jest ono teraz znacznie mniej agresywne niż przed zabiegiem. Jednocześnie zachowała się charakterystyczna ciekawość świata i chęć penetracji całego otoczenia.

PIŚMIENNICTWO


Ryc. – Ł. Skomorucha

1. Bartoszewicz M., Okarma H., Zalewski A., Szczęsna J.: Ecology of the raccoon (Procyon lotor) from western Poland. Ann. Zool. Fennici. 2008, 45, str. 291-298. – 2. Blanton J., Hanlon C., Rupprecht Ch.: Rabies surveillance in the United States during 2006. Journal of the American Veterinary Medical Association, 4/2007, str. 540-556. – 3. Blanton J., Hanlon C., Rupprecht Ch.: Rabies surveillance in the United States during 2009. Journal of the American Veterinary Medical Association, 6/2010, str. 646-657. – 4. Gliński Z., Kostro K.: Choroby zakaźne zwierząt. PWRiL, Warszawa 2003. – 5. Głowaciński Z.: Szop pracz. Księga Gatunków Obcych Inwazyjnych w Faunie Polski, Instytut Ochrony Przyrody PAN w Krakowie, Kraków 2008. – 6. Johnson D.: Raccoon. Exotic DVM, volume 8, issue 6. – 7. Jóźwik T., Pęcherzewski T.: Szopowate; coraz częstsi pacjenci lekarza weterynarii. Weterynaria w Praktyce, listopad-grudzień 6/2008, str. 66-71. – 8. Koepfli K.-P., Gompper M., Eizirik E., Ho Ch., Linden L., Maldonado J., Wayne R.: Phylogeny of the Procyonidae (Mammalia: Carnivora): Molecules, morphology and the Great American Interchange. Molecular Phylogenetics and Evolution, 43 (2007), 1076-1095. – 9. Raccoon Rabies Epizootic – United States, 1993, Morbidity and Mortality Weekly Report, kwiecień 1994. – 10. Sadzikowski A., Szczepaniak K.: Pasożyty wewnętrzne szopów. Magazyn Weterynaryjny, październik 10/2009 (vol. 18, nr 149), str. 1078-1083.

11. Sorvillo F., Ash L., Berlin O., Yatabe J., Degiorgio C., Morse S.: Baylisascaris procyonis: an emerging helminthic zoonosis. Emerging infectious diseases, kwiecień 4/2002, str. 355-359.

< 1 2 3
OSTATNIO DODANE
Nowy test może oznaczać leki, które mogą być szkodliwe dla kotów
Podwyższone stężenia fenobarbitalu u psów po leczeniu flukonazolem – opis dwóch przypadków
Ocena różnych dawek medetomidyny na indukcję wymiotów u kotów
Między obrazem a skalpelem: jak dokładne są badania przedoperacyjne u psów i kotów z chorobami pr...
Osad z pęcherzyka żółciowego u kotów
POLECANE ARTYKUŁY
Chirurgia
Rany u małych zwierząt. Cz. III. Czemu rana się nie goi
Rozród
Postępowanie z cielętami pochodzącymi z trudnych porodów – ocena żywotności
Chirurgia
Chirurgia powiek u psów i kotów – zalecenia praktyczne. Cz. I
Rozród
Parametry okołoporodowe i neonatologiczne u kotów
Rozród
Zapalenie macicy/ropomacicze u małych zwierząt – postępowanie krok po kroku
Rozród
Niektóre przyczyny wyłączania suk z rozrodu
Rozród
Najczęstsze błędy lekarskie podczas opieki nad miotem szczeniąt
Chirurgia
Test Ortolaniego w rozpoznawaniu dysplazji stawu biodrowego u psów
NEWSLETTER
OBSERWUJ NAS NA
NASZE PUBLIKACJE
  • Magazyn Weterynaryjny
  • Zamów prenumeratę
  • Weterynaria po Dyplomie
  • Zamów prenumeratę
  • Czytaj on-line Magazyn Weterynaryjny
  • Czytaj on-line Weterynaria po Dyplomie
  • Filmy
  • Rada Programowa Magazynu Weterynaryjnego


AKADEMIA PO DYPLOMIE WETERYNARIA
  • Termin i miejsce
  • Program
  • Koszty uczestnictwa
  • Rejestracja online


POMOC
  • Polityka prywatnosci
  • Zadaj pytanie
  • Logowanie i rejestracja
  • Regulamin
  • Metody płatności
  • Regulamin publikowania prac
  • Filmy Pomoc
  • Kontakt


KONTAKT

Medical Tribune Polska Sp. z o.o.
ul. Grzybowska 87
00-844 Warszawa
NIP: 521-008-60-45


801 044 415
+48 (22) 444 24 44
kontakt@magwet.pl
Nr konta: 13 1600 1068 0003 0102 0949 9001

Kontakt w sprawie reklam: magwet-reklama@medical-tribune.pl

Anuluj