MAGWET
ZALOGUJ
MAGWET
Prenumeruj
Odnów Subskrypcję
Prenumeruj
Czasopisma
Magazyn Weterynaryjny Weterynaria po Dyplomie
Praktyka
Kliniczna
Anestezjologia Behawioryzm Chirurgia Choroby wewnętrzne Choroby zakaźne Dermatologia Diagnostyka laboratoryjna Diagnostyka obrazowa Endokrynologia Farmakologia i toksykologia Gastroenterologia Geriatria Hematologia Kardiologia Laryngologia Nefrologia i Urologia Neurologia Okulistyka Onkologia Ortopedia Parazytologia Rehabilitacja Rozród Stany nagłe Stomatologia Żywienie
Gatunki
Małe zwierzęta Konie Przeżuwacze Świnie Ptaki Zwierzęta egzotyczne Zwierzęta dzikie
Zarządzanie
Praktyką
Prawo Psychologia Zarządzanie
Wydarzenia
Akademia po Dyplomie POLECAMY Kongresy Multiforum Webinaria Odkryj swój dermatologiczny zmysł
Filmy
Aktualności
Sklep
Koszyk
0
ZALOGUJ
Zarejestruj
Zaloguj
Zarejestruj

Koty Psy Anestezjologia

Moje pierwsze znieczulenie metodą wziewną – zasady pracy z aparatem w lecznicy

06/11/2018

Small moje ryc5a opt

Ryc. 5a. Worek oddechowy w układzie z oddechem zwrotnym, wypełniony prawidłowo.

Small moje ryc5b opt

Ryc. 5b. Worek oddechowy w układzie z oddechem zwrotnym, wypełniony nieprawidłowo (niedopompowany).

Small moje ryc5c opt

Ryc. 5c. Worek oddechowy w układzie z oddechem zwrotnym wypełniony nieprawidłowo (rozdęty).

Worek oddechowy w układzie oddechowym z pochłaniaczem nie jest mocowany bezpośrednio do rur oddechowych, lecz stanowi osobną część do aparatu. Do maszyny najczęściej jest dołączany jeden worek oddechowy o pojemności 1 lub 2 litrów. Wielkość worka oddechowego determinuje objętość oddechowa płuc znieczulanego zwierzęcia. Powinna ona pomieścić maksymalnie 4-5 objętości oddechowych. Dlatego wybierając rozmiar worka oddechowego, mnożymy objętość oddechową (10-20 ml/kg) przez 5. Przykładowo, dla psa o masie 20 kg można użyć worka oddechowego o wielkości od 1 do maksymalnie 2 litrów. U psów otyłych wyliczona wartość powinna być zmniejszona o nadwagę. U tej grupy warto przyjmować objętość oddechową równą 10 ml/kg. Worek przekraczający powyższe wartości spowoduje uszkodzenie pęcherzyków płucnych, natomiast za mały worek będzie przyczyną niedotlenienia oraz zbyt płytkiego znieczulenia. Worek oddechowy podczas oddychania powinien być wypełniony mieszaniną gazów do 2/3 objętości (ryc. 5a-c).

Small 9480

Tabela IV. Etapy pracy z aparatem do znieczulenia

Dodatkowym wyposażeniem niezwiązanym bezpośrednio z aparatem są rurki intubacyjne o średnicy od 2,5 do 11,0, w zależności od średnicy tchawicy zwierząt. Każda rurka intubacyjna niezależnie od rozmiaru ma ujednolicony łącznik, pasujący do rur obiegu oddechowego.

Należy codziennie sprawdzać szczelność układu anestetycznego (7), by ograniczyć skażenie pomieszczenia oraz straty tlenu i gazów anestetycznych dostarczanych do układu. Przegląd szczelności powinien odbywać się w następującej kolejności:

  • otwarcie butli z tlenem/włączenie koncentratora
  • podłączenie rur obiegu oddechowego do aparatu
  • przyłączenie worka oddechowego do aparatu
  • zamknięcie zastawki nadciśnieniowej
  • zatkanie końcówki rury w miejscu, w którym jest podłączana do rurki intubacyjnej
  • odkręcenie przepływomierza i napełnienie układu tlenem aż do ciśnienia 30 cmH2O (wskazanego na manometrze aparatu)
  • zamknięcie przepływomierza i upewnienie się, czy ciśnienie utrzymuje się jeszcze przez mniej więcej 30 sekund
  • utrzymanie ciśnienia wskazuje na szczelność układu anestetycznego
  • odkręcenie zastawki nadciśnieniowej i obniżenie ciśnienia w układzie, odłączenie rur obiegu oddechowego, zamknięcie przepływomierza i butli/koncentratora.


Planując zakup aparatu, warto także dowiedzieć się o czas gwarancji na naprawę oraz gwarancję na kalibrację parownika, gdyby się rozszczelnił. Dużym ułatwieniem jest również możliwość montażu aparatu w docelowym miejscu w lecznicy. Należy zapytać, czy jest on w cenie zakupu sprzętu. W dniu montażu powinno się już mieć butlę lub koncentrator z odpowiednim reduktorem, aby sprawdzić podłączenia i szczelność układu.

Pierwsze uruchomienia maszyny i obsługa mogą na początku wydawać się trudne, ale ze względu na prostą budowę aparatów dostępnych dla lecznic małych zwierząt w późniejszym użytkowaniu nie stanowi to problemu. Dla ułatwienia poszczególne czynności podczas uruchamiania aparatu przed znieczuleniem zawarto w tab. IV.


SUMMARY

My first inhalation anesthesia – practical aspects and principles of working with the machine in small animal clinic

Inhalant anesthesia is increasingly popular and is readily used in veterinary medicine. Owing to easy availability and the variety of devices available, where the only limiting factor is the price, this type of anesthesia can be used not only in large 24-hour clinics. Veterinarians considering the introduction of this new method of anesthesia come up with many questions regarding the equipment, its technical requirements and parameters. This article contains answers to the most frequently asked questions regarding the conditions that should be met in an anesthesia room in the clinic, the most important technical parameters which should be taken into account when choosing equipment, and machine settings during operation.


Key words: inhalant anesthesia, anesthesia machine, dog, cat


Ryc. – Autorka

PIŚMIENNICTWO

1. Baum J., Zuchner K., Holschner U., Sievert B., Stanke H.G., Gruchmann T., Rathgeber J.: Climatization of anesthetic gases using different breathing hose systems. Anaesthesist. 2000, 49 (5), 402-411.

2. Bennett R.C., Fancy S., Walsh C.M., Brown A.J., Taylor P.M.: Comparison of sevoflurane and isoflurane in dogs anesthesia. Vet Anaest Analg J. 2008, 49, 8, 392-397.

3. Brattwall M., Warren-Stomberg M., Hesselvik F., Jakobsson J.: Breif review: theory and practice of minimal fresh gas flow anesthesia. Can J Anesth. 2012, 59 (8), 785-797.

4. Duke-Novakovski T., Seymour Ch.: Anestezjologia i leczenie przeciwbólowe psa i kota. BSAVA. Urban&Partner, 2016.

5. Galloway D.S., Reaugh H.F., Mandsager R.E., Payton M.E., Inoue T., Portillo E.: Anesthetic indices of sevoflurane and isoflurane in unpremedicated dogs. J Am Vet Med. Assoc. 2004, 225, 5, 700-704.

6. Garg R., Gupta R.C.: Analysis of oxygen, anesthesia agent and flows in anesthesia machine. Indian J Anesth. 2013, 57 (5), 481-488.

7. Goneppanavar U., Prabhu M.: Anesthesia machine: checklist, hazards, scavenging. Indian J Anesth. 2013, 57 (5), 533-540.

8. Gurudatt C.L.: The basic anesthesia machine. Indian J Anesth. 2013, 57 (5), 438-445.

9. Hendrickx J.F., De Wolf A.: Special aspects of pharmacokinetics of inhalation anesthesia. Handb Exp Pharmacol. 2008, 182, 159-186.

10. Hofmeister E.H., Brainard B.M., Sams L.M. Allman D.A., Cruse A.M.: Evaluation of induction characteristics and hypnotic potency of isoflurane and sevoflurane in healthy dogs. Am J Vet Research. 2008, 69, 4, 451-456.

11. Johansson A., Lundberg D., Luttropp H.H.: Low-flow anesthesia with desflurane: kinetics during clinical procedures. Eur J Anaesthesiol. 2001, 18 (8), 499-504.

12. Meyer J.U., Kulik G., Wruck N., Kuck K., Manigel J.: Advanced technologies and devices for inhalational anesthetic drug dosing. Handb Exp Pharmacol. 2008, 182, 541-570.

13. Patil V.P., Shetmahajan M.G., Divatia J.V.: The modern integrated anesthesia workstation. Indian J Anesth. 2013, 57 (5), 446-454.

14. Seymour Ch., Duke-Novakovski T.: Canine and feline anesthesia and analgesia. Second Edition. 2007, p. 153.

15. Shaughnessy M.R., Hofmeister E.H.: A systematic reveiw of sevoflurane and isoflurane minimum alveolar concentration in domestic cats. Vet Anaest Analg J. 2014, 41 (1), 1-13.

< 1 2 3
OSTATNIO DODANE
Transformacja opieki nad kotami w leczeniu cukrzycy
Ukończyłeś studia weterynaryjne w 2025 roku? Skorzystaj z bonu edukacyjnego!
Certyfikowane Szkolenie Kardiologia psów i kotów
AI a diagnostyka weterynaryjna – nowa era w radiologii?
Nowe spojrzenie na czynniki związane z powszechną chorobą wśród psów i ludzi
POLECANE ARTYKUŁY
Farmakologia i toksykologia
Opioidowa farmakoterapia bólu okołooperacyjnego u psów i kotów
Onkologia
Ośmioletnia suka z nawrotowym krwiomoczem
Hematologia
Zależne od rasy zmiany w obrazie krwi u psów i kotów. Cz. II
Choroby zakaźne
Grzybice narządowe kotów – aktualne dane
Onkologia
Dziesięć najczęstszych nowotworów u psów w Polsce
Chirurgia
Rany u małych zwierząt. Cz. III. Czemu rana się nie goi
Dermatologia
Toczniowe zniekształcenie pazurów u psów jako rzadka forma tocznia – rozpoznawanie i leczenie
Parazytologia
Motyliczka mięśniowa – możliwości rozpoznawania nowego zagrożenia
NEWSLETTER
OBSERWUJ NAS NA
NASZE PUBLIKACJE
  • Magazyn Weterynaryjny
  • Zamów prenumeratę
  • Weterynaria po Dyplomie
  • Zamów prenumeratę
  • Czytaj on-line Magazyn Weterynaryjny
  • Czytaj on-line Weterynaria po Dyplomie
  • Filmy
  • Rada Programowa Magazynu Weterynaryjnego


AKADEMIA PO DYPLOMIE WETERYNARIA
  • Termin i miejsce
  • Program
  • Koszty uczestnictwa
  • Rejestracja online


POMOC
  • Polityka prywatnosci
  • Zadaj pytanie
  • Logowanie i rejestracja
  • Regulamin
  • Metody płatności
  • Regulamin publikowania prac
  • Filmy Pomoc
  • Kontakt


KONTAKT

Medical Tribune Polska Sp. z o.o.
ul. Grzybowska 87
00-844 Warszawa
NIP: 521-008-60-45


801 044 415
+48 (22) 444 24 44
kontakt@magwet.pl
Nr konta: 13 1600 1068 0003 0102 0949 9001

Kontakt w sprawie reklam: magwet-reklama@medical-tribune.pl

Anuluj