WPD
ZALOGUJ
WPD
Zobacz też >
MAGWET
Prenumeruj
Odnów Subskrypcję
Prenumeruj
Zostań członkiem społeczności
MAGWET
Czasopisma
Magazyn Weterynaryjny Weterynaria po Dyplomie
Praktyka
Kliniczna
Anestezjologia Behawioryzm Chirurgia Choroby wewnętrzne Choroby zakaźne Dermatologia Diagnostyka laboratoryjna Diagnostyka obrazowa Endokrynologia Farmakologia i toksykologia Gastroenterologia Geriatria Hematologia Kardiologia Laryngologia Nefrologia i Urologia Neurologia Okulistyka Onkologia Ortopedia Parazytologia Rehabilitacja Rozród Stany nagłe Stomatologia Żywienie
Gatunki
Konie Koty Psy
Wydarzenia
Kongres Webinaria
Filmy
Sklep
Koszyk
0
ZALOGUJ
Zaloguj
Zarejestruj

Diagnostyka laboratoryjna Parazytologia

Jak badać kał?

13/03/2018

Artykuł ukazał się
Weterynaria po Dyplomie
2012
01

Zapytaj eksperta – patologia kliniczna

Jak badać kał?

Wayne L. Hunthausen, DVM

Animal Behavior Consultations, Westwood, Kan.

Która metoda jest najlepsza do wykrywania jaj pasożytów w rutynowym badaniu kału?

Badanie kału metodą flotacji z użyciem roztworu Sheathera uważa się za złoty standard w wykrywaniu większości, jeśli nie wszystkich, jaj robaków pasożytniczych oraz oocyst kokcydiów.1,2 Jest to najbardziej odpowiedni test w rutynowej diagnostyce. Flotacja kału opiera się na zasadzie, że ciężar właściwy większości jaj pasożytów (oraz niektórych larw) wynosi od 1,05 do 1,20,3 a więc mają one mniejszą gęstość niż roztwory flotacyjne. W efekcie jaja pasożytów (oraz niektóre larwy) wypływają na powierzchnię roztworu flotacyjnego. Wirowanie skraca czas potrzebny do tego, by jaja wypłynęły na powierzchnię. Umożliwia również wydobycie większej liczby jaj niż w przypadku metod, w których nie stosuje się wirowania.1,2 Co więcej, za pomocą wirowania łatwiej jest wykryć takie pasożyty jak Trichuris spp., których jaja charakteryzują się wysokim ciężarem właściwym i są nieliczne (patrz ramka „Schemat badania kału metodą flotacji wirówkowej”).

Na rynku dostępny jest gotowy roztwór Sheathera, można go również przygotować w lecznicy (patrz ramka „Przygotowanie roztworu sacharozy Sheathera”). Ma on wyższy ciężar właściwy (1,27) niż standardowe roztwory soli, takie jak siarczan cynku (ciężar właściwy 1,18), chlorek sodu i azotan sodu (ciężar właściwy od 1,18 do 1,20). Dzięki temu jest szczególnie wydajnym roztworem flotacyjnym. Na jego powierzchni unoszą się prawie wszystkie jaja pasożytów, w tym te o wyższym ciężarze właściwym (takie jak jaja pasożytów z rodzaju Taenia czy Physaloptera).

Bez względu na to, który roztwór zostanie wybrany, należy zmierzyć jego ciężar właściwy za pomocą hydrometru i powtarzać pomiar rutynowo (np. co miesiąc), by wykryć ewentualne zmiany spowodowane parowaniem. Zbyt wysoki ciężar właściwy roztworu może zniekształcić jaja lub cysty pierwotniaków (np. cysty Giardia spp.), a nawet doprowadzić do ich pęknięcia. Ze względu na różnice w ciężarze właściwym do izolacji cyst pierwotniaków z rodzaju Giardia zaleca się stosowanie roztworu siarczanu cynku zamiast roztworu Sheathera.

Schemat badania kału metodą flotacji wirówkowej

1. Wymieszaj około 2-5 g kału z 10 ml roztworu flotacyjnego. Przelej mieszaninę do szklanki przez sitko do herbaty. Aby ułatwić czyszczenie, sitko można wyścielić kwadratem z gazy.

2. Wlej przefiltrowany roztwór do 15-mililitrowej probówki wirówkowej.

3. Wiruj z prędkością 1200 rpm (280 g) przez 5 minut.

4. Umieść końcówkę jednorazowej pipety pod powierzchnią mieszaniny i dodawaj świeży roztwór flotacyjny, aż wytworzy się menisk wypukły. Pamiętaj, by nie przepełnić probówki, ponieważ może to doprowadzić do utraty jaj znajdujących się w roztworze przy przykrywaniu probówki szkiełkiem nakrywkowym (następny krok).

5. Przykryj probówkę szkiełkiem nakrywkowym na 10 minut.

6. Zdejmij szkiełko nakrywkowe i umieść je na szkiełku podstawowym (mokrą stroną w kierunku szkiełka podstawowego).

7. Obejrzyj dokładnie cały obszar pod szkiełkiem nakrywkowym w powiększeniu 10×. Obiektyw 40× może być wykorzystany do potwierdzenia rozpoznania.


W miarę możliwości należy badać co najmniej 1 do 2 g kału. Przy analizowaniu mniejszych ilości istnieje ryzyko uzyskania wyników fałszywie ujemnych, szczególnie jeżeli liczba jaj w kale jest niewielka. Próbki kału powinny być względnie świeże. Najlepiej badać je w dniu pobrania, ponieważ jaja po wydaleniu kału rozwijają się dalej i mogą wykluwać się z nich larwy. Niższa temperatura spowalnia niektóre z tych zmian, jednak organizmy o większej wrażliwości (np. pierwotniaki z rodzaju Giardia) mogą nie przetrwać przechowywania.

W niektórych sytuacjach mogą być wskazane również inne techniki. Wykonanie preparatu bezpośredniego z kału w kropli roztworu fizjologicznego jest użyteczne w identyfikacji ruchomych organizmów, takich jak trofozoity Giardia spp. Badanie cytologiczne kału (rozmaz suszony w powietrzu atmosferycznym) może być wykorzystane do analizy nacieków komórkowych oraz flory bakteryjnej (np. Campylobacter czy Clostridium spp.). Metoda Baermanna umożliwia wykrycie larw nicieni, takich jak Aelurostrongylus i Strongyloides spp., natomiast metoda sedymentacji pozwala na izolację jaj przywr oraz embrionalnych jaj nicieni, które mają wyższy ciężar właściwy i trudniej unoszą się na powierzchni roztworu. Wybór metody badania kału powinien opierać się na objawach klinicznych i diagnostyce różnicowej. U niektórych pacjentów konieczne jest wykonanie całego panelu badań kału.

Przygotowanie roztworu sacharozy Sheathera*

454 g cukru granulowanego

355 ml wody z kranu

6 ml 37% formaldehydu

Wodę należy podgrzać niemal do temperatury wrzenia. Dodać cukier granulowany i mieszać do rozpuszczenia. Poczekać, aż mieszanina ostygnie do temperatury pokojowej i dodać formaldehyd. Sprawdzić ciężar właściwy roztworu i wyregulować go do 1,27, dodając wody lub cukru.

* Źródło: Blagburn BL, Butler JM. Optimize intestinal parasite detection with centrifugal fecal flotation. Vet Med 2006;101(7):455-464.


Veterinary Medicine • Vol 105, No 10, October 2010, p. 468

Joyce S. Knoll, VMD, PhD, DACVP
Department of Biomedical Sciences, Cummings School of Veterinary Medicine, Tufts University, North Grafton, MA 01536


PIŚMIENNICTWO

1. Broussard JD. Optimal fecal assessment. Clin Tech Small Anim Pract 2003;18(4):218-230.

2. Dryden MW, Payne PA, Ridley R, et al. Comparison of common fecal flotation techniques for the recovery of parasite eggs and oocysts. Vet Ther 2005;6(1):15-28.

3. David ED, Lindquist WD. Determination of the specific gravity of certain helminth eggs using sucrose density gradient centrifugation. J Parasitol 1982;68(5):915-919.

NAJPOPULARNIEJSZE
Onkologia
Rak przejściowokomórkowy (TCC), czyli złośliwy nowotwór pęcherza moczowego
Nowa formuła Kongresu ApD Weterynaria – dwa razy więcej wiedzy!
Anestezjologia
Postawmy na rozsądek podczas planowania znieczulenia regionalnego
POLECANE ARTYKUŁY
Parazytologia
Motyliczka mięśniowa – możliwości rozpoznawania nowego zagrożenia
Parazytologia
Zachowania prozdrowotne właścicieli psów i kotów w zakresie profilaktyki chorób pasożytniczych
Parazytologia
Zoonotyczne pasożyty psów i kotów – prawdy i mity
Parazytologia
Kryptosporydioza psów i kotów – problem często pomijany?
Parazytologia
Inwazje pasożytów wewnętrznych u domowych gryzoni
Parazytologia
Jak się pozbyć... włosogłówki?
Diagnostyka laboratoryjna
Weterynaria sądowa – badania dodatkowe, a może podstawowe?
Diagnostyka laboratoryjna
Badania biochemiczne krwi w rozpoznawaniu i leczeniu zalegania okołoporodowego u krów
NEWSLETTER
OBSERWUJ NAS NA
NASZE PUBLIKACJE
  • Magazyn Weterynaryjny
  • Zamów prenumeratę
  • Czytaj on-line
  • Weterynaria po Dyplomie
  • Zamów prenumeratę
  • Czytaj on-line
  • Dodatek Online
  • Filmy


AKADEMIA PO DYPLOMIE WETERYNARIA
  • Termin i miejsce
  • Program
  • Koszty uczestnictwa
  • Rejestracja online


POMOC
  • Kontakt
  • Polityka prywatnosci
  • Zadaj pytanie
  • Logowanie i rejestracja
  • Regulamin
  • Metody płatności
  • Regulamin publikowania prac
  • Filmy Pomoc


KONTAKT

Medical Tribune Polska Sp. z o.o.
ul. Powązkowska 44C
01-797 Warszawa
NIP: 521-008-60-45


801 044 415
+48 (22) 444 24 44
kontakt@magwet.pl
Nr konta: 13 1600 1068 0003 0102 0949 9001

Kontakt w sprawie reklam: magwet-reklama@medical-tribune.pl

Anuluj